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背景 目的 方法與步驟
50株粘菌素耐藥(n=32)和敏感(n=18)肺炎克雷伯菌分離株。
由 Liofilchem™ComASP™粘菌素測(cè)試組(Liofilchem,Roseto degli Abruzzi,Te,Italy)使用 BMD 方法對(duì)臨床分離株進(jìn)行粘菌素敏感性試驗(yàn),該方法含有27倍稀釋 (0.25–16mg/L) 的抗生素。根據(jù) EUCAST 臨床折點(diǎn) (V12.0,2022) 判讀 MIC 結(jié)果。
1. 使用PCR方法測(cè)定肺炎克雷伯菌mcr基因的缺失或者突變情況; 2. 將所有肺炎克雷伯菌菌株在麥康凱瓊脂平板 (bioMérieux) 上于37℃下傳代培養(yǎng)24h;使用生長的菌落制備0.5McF菌懸液。除接種量外,按照標(biāo)準(zhǔn)程序進(jìn)行 ComASP(Compact Antimicrobial Susceptibility Panel) 粘菌素試驗(yàn)。 3. 在37℃下孵育3h后,取1μL菌懸液點(diǎn)樣至靶板,干燥后,滴加裂解液和基質(zhì)溶液,干燥后在Autof 1000 MS上使用“微生物”自動(dòng)采集模式進(jìn)行校準(zhǔn)和鑒定。 4. CORE數(shù)據(jù)分析 A定性分析:根據(jù)以下參數(shù)將檢測(cè)標(biāo)本歸類為耐藥(colR)或敏感(colS):MALDI-TOF MS評(píng)分<6.0=S,≥6.0=R。 B定量分析:在0.25–16mg/L范圍內(nèi)獲得的所有質(zhì)譜評(píng)分與對(duì)照組質(zhì)譜評(píng)分一起納入分析中。MIC值確定為質(zhì)譜評(píng)分<6的最低藥物稀釋度。報(bào)告所有樣本的平均值 (G mean) 和根據(jù)重復(fù)樣本計(jì)算的模態(tài)MIC。如果是16mg/L質(zhì)譜評(píng)分>6,報(bào)告MIC值>16mg/L,測(cè)試樣本歸類為colR。相反,在0.25mg/L質(zhì)譜評(píng)分<6的情況下,報(bào)告MIC值<0.25mg/L,并將樣品歸類為colS。 根據(jù)上述定性或定量CORE試驗(yàn)的算法對(duì)每種菌株進(jìn)行分類。在使用粘菌素的EUCAST臨床折點(diǎn) (V12.0,2022) 進(jìn)行解釋后,將結(jié)果與常規(guī)BMD試驗(yàn)獲得的結(jié)果進(jìn)行比較。 結(jié)果 通過 MALDI-TOF MS 分析的簡單算法(MALDI-TOF MS評(píng)分<6.0=或≥6.0=R),定性 CORE 測(cè)定結(jié)果和樣本表型總體一致,CA(分類一致性)=100%。此外,在 colR 和 colS 分離株的定量 CORE 試驗(yàn)中, EA(基本一致性)分別達(dá)到93.7%和83.3%。 根據(jù)本次50例肺炎克雷伯菌分離株的 PCR檢測(cè)、BMD試驗(yàn)、MALDI-TOF MS 鑒定的結(jié)果進(jìn)行 CORE 分析,可在3h內(nèi)為臨床醫(yī)生提供藥敏結(jié)果,而無需等待常規(guī) BMD 分析所需的16-24h。此外,使用 MALDI-TOF 在正離子模式下獲得粘菌素耐藥表型檢測(cè)的可能性,無需切換到負(fù)離子模式,既避免了校準(zhǔn)步驟,又驗(yàn)證了 CORE 方法適用于當(dāng)前常規(guī)的 MALDI-TOF MS 鑒定工作流程。 綜上所述,全自動(dòng)微生物質(zhì)譜檢測(cè)系統(tǒng)不僅廣泛應(yīng)用于微生物鑒定,而且可以實(shí)現(xiàn)快速鑒定肺炎克雷伯菌粘菌素耐藥/敏感菌株!為進(jìn)一步擴(kuò)大 MALDI-TOF MS 在快速藥敏檢測(cè)領(lǐng)域的應(yīng)用提供了依據(jù);為高致病病原體、高耐藥病原體的快速藥敏/耐藥表型檢測(cè)拓展了新的方向! 全自動(dòng)微生物質(zhì)譜不僅用于粘菌素耐藥表型的快速檢測(cè)!同時(shí)可檢測(cè)MRSA、ESBLs、CRE、CRAB、CRPA、VRE等耐藥表型,及各種酶型如KPC、OXA、NDM、VIM等;助力細(xì)菌耐藥防控! |